Published Sep 4 – 18, 2026 | Version v1

Conjuntos de dados para o Treinamento em Reprodutibilidade para Análise de Dados (TRAD2026)

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Description

Treinamento em Reprodutibilidade para Análise de Dados (TRAD2026): Descrição dos conjuntos de dados ômicos

Laboratório Nacional de Biociências (LNBio) · Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais (CNPEM)

Laboratório Nacional de Biorrenováveis (LNBR) · Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais (CNPEM)

Descrição

Este depósito reúne subconjuntos de dados ômicos selecionados para as atividades práticas do Treinamento em Reprodutibilidade para Análise de Dados (TRAD2026). Cada subconjunto foi definido pela seleção de acessos SRR representativos dos respectivos estudos de origem. O material contempla diferentes abordagens de geração e análise de dados biológicos, incluindo genômica, transcriptômica, metagenômica shotgun e sequenciamento de amplicons do gene 16S rRNA.

Ao todo, são disponibilizados nove conjuntos de dados, correspondentes a três conjuntos genômicos, dois transcriptômicos, dois metagenômicos shotgun e dois conjuntos de amplicons 16S rRNA. A seleção inclui dados produzidos por Illumina, Ion Torrent, Oxford Nanopore e PacBio HiFi, permitindo explorar diferentes tecnologias e formas de organização das leituras.

Escopo e seleção dos dados

Os estudos de origem possuem conjuntos de dados mais amplos. Para o TRAD2026, foram selecionados 49 acessos SRR representativos, de modo a tornar o volume de dados compatível com os objetivos e a infraestrutura das atividades práticas.
 
Neste depósito, o termo subconjunto refere-se à seleção de acessos SRR específicos. Não houve subamostragem nem remoção de reads dentro dos acessos escolhidos: cada arquivo disponibilizado corresponde ao conjunto completo de leituras do respectivo acesso no Sequence Read Archive (SRA).

Os códigos `PRJNA` identificam BioProjects, enquanto cada código `SRR` identifica um conjunto de leituras depositado no SRA.
 

Subconjuntos selecionados

 

Conjunto Organismo ou contexto Tipo e tecnologia dos dados Número de acessos Acessos selecionados
Dourado Salminus brasiliensis Genômica/WGS; Illumina paired-end 3 SRR17407720, SRR37670351 e SRR37671906
Bugio-preto Alouatta caraya Genômica/WGS; Oxford Nanopore PromethION; leituras longas não pareadas 1 SRR38321363
Flor-de-Carajás Ipomoea cavalcantei Genômica/WGS; PacBio Sequel IIe; leituras HiFi não pareadas 1 SRR35396924
Açaí Frutos de Euterpe oleracea RNA-seq; Oxford Nanopore; leituras longas não pareadas 4 SRR33581420, SRR33581421, SRR33581422 e SRR33581424
Câncer de cabeça e pescoço Tumores humanos primários e recorrentes (HNSCC) RNA-seq; Illumina paired-end 4 SRR14428034, SRR14428035, SRR14428042 e SRR14428043
Microbiota de abelhas Microbiota intestinal de Apis mellifera Metagenômica shotgun; Illumina paired-end 3 SRR24759596–SRR24759598
Microbiota de capivara Microbiota intestinal de Hydrochoerus hydrochaeris Metagenômica shotgun; Illumina paired-end 3 SRR11852046–SRR11852048
16S da capivara Microbiota intestinal de Hydrochoerus hydrochaeris Amplicon 16S rRNA; Illumina paired-end 6 SRR11852069–SRR11852074
16S de água e efluentes Amostras brasileiras de água e efluentes coletadas em São Paulo Amplicon 16S rRNA; Ion Torrent S5 single-end 24 SRR27211468–SRR27211473, SRR27211477, SRR27211486–SRR27211492, SRR27211499, SRR27211506–SRR27211512 e SRR27211521–SRR27211522

 

No conjunto de água e efluentes, foram selecionadas 24 amostras brasileiras: seis amostras de água da Raia da USP, seis de efluente hospitalar do Hospital das Clínicas da FMUSP e 12 de efluentes urbanos de duas estações de tratamento de São Paulo. As coletas ocorreram entre janeiro e junho de 2022. Os amplicons foram sequenciados em Ion Torrent S5 no modo single-end e, portanto, não possuem pares R1 e R2.

O estudo de Ipomoea cavalcantei produziu duas montagens haplotípicas, depositadas sob os acessos JBUPYS000000000 e JBUPYT000000000, além de dados brutos PacBio HiFi e Hi-C associados aos BioProjects PRJNA1327434 e PRJNA1327435 e ao BioSample SAMN51280989. Para o TRAD2026, foi selecionado somente o acesso PacBio HiFi SRR35396924.

Origem dos dados

Conjunto BioProject ou estudo de origem Publicação associada
Dourado PRJNA792751, PRJNA1433447 e PRJNA1433448 Graciano et al. (2022), para SRR17407720; projetos de 2026 ainda sem artigo associado
Bugio-preto PRJNA1404690 BioProject de 2026 ainda sem artigo associado
Flor-de-Carajás PRJNA1327434 e PRJNA1327435; SRP620331 Canesin et al. (2026)
Açaí PRJNA1265274, PRJNA1265420 e PRJNA1262982 Barbosa et al. (2026)
HNSCC PRJNA727315; GSE173855 Weber et al. (2022)
Microbiota de abelhas PRJNA977416 Sbaghdi et al. (2024)
Metagenômica da capivara PRJNA563062 Cabral et al. (2022)
16S da capivara PRJNA563062 Cabral et al. (2022)
16S de água e efluentes PRJNA880881 Scaccia et al. (2024)

Organização dos arquivos

Os dados estão organizados em diretórios correspondentes a cada conjunto biológico:

.
├── 16S_Hydrochoerus_hydrochaeris/
├── 16S_Waterwaste/
├── Alouatta_sp/
├── Apis_mellifera/
├── Euterpe_oleracea/
├── HNSCC/
├── Ipomoea_cavalcantei/
├── MG_Hydrochoerus_hydrochaeris/
└── Salminus_brasiliensis/

Nos conjuntos paired-end, cada acesso é representado por dois arquivos FASTQ, geralmente identificados pelos sufixos _1 e _2 ou por R1 e R2. Nos conjuntos single-end e de leituras longas não pareadas, há apenas um arquivo de leitura por acesso SRR.

Referências bibliográficas

  1. GRACIANO, R. C. D.; OLIVEIRA, R. S.; SANTOS, I. M.; YAZBECK, G. M. Genomic Resources for Salminus brasiliensis. Frontiers in Genetics, v. 13, artigo 855718, 2022. https://doi.org/10.3389/fgene.2022.855718.

  2. CANESIN, L. E. C.; VILLAÇA, S. T.; MAGALHÃES, L.; et al. Diploid chromosome-level genome assembly of the Amazonian endemic morning glory Ipomoea cavalcantei D.F. Austin. Scientific Data, v. 13, artigo 972, 2026. https://doi.org/10.1038/s41597-026-07258-4.

  3. BARBOSA, M. S. R.; et al. The genome sequence of the açaí berry (Euterpe oleracea Mart.) and RNA-Seq analysis of the fruit ripening. Genome, v. 69, p. 1–14, 2026. https://doi.org/10.1139/gen-2025-0105.

  4. WEBER, P.; KÜNSTNER, A.; HESS, J.; et al. Therapy-Related Transcriptional Subtypes in Matched Primary and Recurrent Head and Neck Cancer. Clinical Cancer Research, v. 28, n. 5, p. 1038–1052, 2022. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-21-2244.

  5. SBAGHDI, T.; GARNEAU, J. R.; YERSIN, S.; et al. The Response of the Honey Bee Gut Microbiota to Nosema ceranae Is Modulated by the Probiotic Pediococcus acidilactici and the Neonicotinoid Thiamethoxam. Microorganisms, v. 12, n. 1, artigo 192, 2024. https://doi.org/10.3390/microorganisms12010192.

  6. CABRAL, L.; PERSINOTI, G. F.; PAIXÃO, D. A. A.; et al. Gut microbiome of the largest living rodent harbors unprecedented enzymatic systems to degrade plant polysaccharides. Nature Communications, v. 13, artigo 629, 2022. https://doi.org/10.1038/s41467-022-28310-y.

  7. SCACCIA, N.; DA SILVA FONSECA, J. V.; MEGUEYA, A. L.; et al. Analysis of chlorhexidine, antibiotics and bacterial community composition in water environments from Brazil, Cameroon and Madagascar during the COVID-19 pandemic. Science of the Total Environment, v. 932, artigo 173016, 2024. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2024.173016.

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