Substitución de la harina de pescado por harina de soya en el crecimiento de juveniles del "caracol tegogolo" Pomacea patula catemacensis en laboratorio
Authors/Creators
- 1. Estancias Posdoctorales por México, Consejo Nacional de Humanidades, Ciencia y Tecnología. Instituto Politécnico Nacional, Centro Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Integral Regional, Unidad Sinaloa. Blvd. Juan de Dios Bátiz Paredes #250, Colonia San Joachin, Guasave, Sinaloa, C.P. 81101, México.
- 2. Instituto Politécnico Nacional, Centro Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Integral Regional, Unidad Sinaloa. Blvd. Juan de Dios Bátiz Paredes #250, Colonia San Joachin, Guasave, Sinaloa, C.P. 81101, México.
Description
RESUMEN El cultivo de especies acuáticas alimentados con ingredientes de fácil manejo, disponibles y baratos, representa una opción para cubrir la creciente demanda de proteína de alta calidad para consumo humano. El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de la substitución de harina de pescado (HP) por harina de soya (HS) en diferentes porcentajes (100HP, 20HS/80HP, 40HS/60HP, 60HS/40HP, 80HS/20HP y 100HS) en el crecimiento de juveniles del “caracol tegogolo”, Pomacea patula catemacensis (< 0,20 g peso inicial promedio), bajo condiciones de laboratorio. Las variables del agua en las peceras (temperatura = 27,36±0,50 °C), oxígeno disuelto = 4,09±0,87 mg L−l y pH = 7,56±0,29) se mantuvieron estables en todo el tiempo experimental. Las dietas (isoproteicas = 39,9±0,54%) se suministraron ad libitum y se realizó un recambio de agua de 100% diariamente. Los caracoles de cada pecera (n = 10) fueron pesados y medidos al inicio del ensayo y cada semana durante los 60 días experimentales. Además, se calculó el rango de crecimiento específico (CE, %) y la ganancia en peso promedio por día (GPPD, g). Los valores más altos del peso húmedo y longitud de la concha de los caracoles al final del cultivo se registraron para la dieta 100HP (4,70±0,40 g y 2,64±0,47 cm, respectivamente), mientras que los más bajos (2,30±0,19 g y 2,13±0,45 cm, respectivamente) se observaron para el tratamiento 80HS/20HP (p < 0,05). El CE final fluctuó desde 2,14±1,13 hasta 4,65±2,39% para los grupos 80HS/20HP y 100HS, respectivamente. El tratamiento 100HP obtuvo la mayor GPPD (0,153±0,013 g) en la sexta semana. El costo de la dieta 100HS resultó ser 35,62% más barata que la 100HP. Se recomienda la substitución total de HP por HS en la dieta de juveniles del tegogolo, aunque es necesario evaluar su efecto hasta que alcancen la talla comercial (32 mm de longitud).
ABSTRACT Cultivating aquatic species fed with easy-to-handle, available, and cheap ingredients represent an option to meet the growing demand for high-quality protein for human consumption. The aim of the present study was to evaluate the effect of replacing fish meal (HP) with soybean meal (HS) in different percentages (100HP, 20HS/80HP, 40HS/60HP, 60HS/40HP, 80HS/20HP and 100HS) to feed juveniles of the “tegogolo snail”, Pomacea patula catemacensis (< 0.20 g average initial weight), under laboratory conditions. The water environmental variables in the snail tanks were: temperature 27.36±0.50 °C, dissolved oxygen 4.09±0.87 mg L−l, and pH = 7.56±0.29), which remained stable throughout the study. The diets (isoprotein = 399±0,54%) were supplied ad libitum and 100% water exchange was performed daily. All snails in each tank (n = 10) were weighed and measured at the beginning of the trial and every week during the 60 experimental days, to evaluate their growth. In addition, the specific growth range (CE, %) and the average weight gain per day (GPPD, g) were calculated. The highest mean values of total wet weight and shell length of snails at the end of culture were recorded for the 100HP diet (4.70±0.40 g and 2.64±0.47 cm, respectively), while the lowest values (2.30±0.19 g and 2.13±0.45 cm, respectively) were observed for the 80HS/20HP treatment (p < 0.05). The final CE ranged from 2.14±1.13 to 4.65±2.39% for the 80HS/20HP and 100HS groups, respectively. The 100HP treatment obtained the highest GPPD (0.153±0.013 g) in the sixth week. The cost of the 100HS diet was 35.62% cheaper than the 100HP. The total replacement of HP by HS in the diet of juvenile tegogolo is recommended, although it is necessary to evaluate its effect until they reach commercial size (32 mm in length).
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- Translated title
- Substitution of fish meal by soybean meal in the growth of juveniles of the "tegogolo snail" Pomacea patula catemacensis in laboratory
Dates
- Submitted
-
2024-07-26
- Accepted
-
2024-11-11
- Available
-
2024-11-15
References
- Anisuzzaman M., Haque M.M., Kamrunnahar K., Kang S. (2016). Freshwater snail (Viviparus sp.); its potential to use in fish feed formulation. American Scientific Research Journal for Engineering, Technology, and Sciences 18(1):182−195.
- AOAC. (Association of Official Analytical Chemists, 1999). Animal Food. In: Cunniff P (Ed.). Official Methods of analysis of AOAC international. Gaithersburg, Maryland, USA, pp. 1−43.
- Berry J.P., Jaja-Chimedza A., Dávalos-Lind L., Lind O. (2012). Apparent bioaccumulation of cylindrospermopsin and paralytic shellfish toxins by finfish in Lake Catemaco (Veracruz, Mexico). Food Additives and Contaminants - Part A 29:314−321. https://doi.org/10.1080/19440049.2011.597785
- Bligh E.G., Dyer W.I. (1959). A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology 37:911−917.
- Bombeo-Tuburan I., Fukumoto S., Rodríguez E.M. (1995). Use of the golden apple snail, cassava, and maize as feeds for the tiger shrimp, Penaeus monodon, in ponds. Aquaculture 131:91−100. https://doi.org/10.1016/0044-8486(94)00329-M.
- Calderón-Villagómez H.E., Gonzalez-Enriquez R., Durán de Bazúa C. (2001). Plaguicidas en sedimentos y organismos acuáticos del lago de Catemaco, Veracruz, México. Revista Internacional de Contaminación Ambiental 17:23−30.
- Castillo-Capitán G., Velázquez-Silvestre M.G., De los Santos-Castillo J.E., Hernández-Velázquez L. (2020). Cultivo de Pomacea patula catemacensis como estrategia de producción piscícola para los productores acuícolas de Catemaco, Veracruz. Revista Científica Biológico Agropecuaria Tuxpan 8(2):43−51.
- Castillo-Rodríguez Z.G. (2014). Biodiversidad de moluscos marinos en México. Revista Mexicana de Biodiversidad 85:S419−S430.
- Church D.C., Pond W.G. (1982). Basic Animal Nutrition and Feeding. Wiley J., New York, NY, USA, pp. 420.
- CONAPESCA (Comisión Nacional de Acuacultura y Pesca del Gobierno de México, 2023). Sistema de información de pesca y acuacultura. https://www.gob.mx/conapesca/es/acciones-y-programas/sistema-deinformacion-de-pesca-y-acuacultura-sipesca.
- Corzas-Cruz J.S., Silva-Gómez S.E. (2021). La helicicultura como alternativa de desarrollo en México. Contactos, Revista de Educación en Ciencias e Ingeniería 120.
- Czaja A., Meza-Sánchez I.G., Estrada-Rodríguez J.L., Romero-Méndez U., Sáenz-Mata J., Ávila-Rodríguez V., Becerra-López J.L., Estrada-Arellano J.R., Cardoza-Martínez G.F., Aguillón-Gutiérrez D.R., Cordero-Torres D.G., Covich A.P. (2020). The freshwater snails (Mollusca: Gastropoda) of Mexico: updated checklist, endemicity hotspots, threats and conservation status. Revista Mexicana de Biodiversidad 91:e912909. https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2020.91.2909
- Duhart F. (2009). Caracoles y sociedades en Europa desde la Antigüedad. Reflexiones etnozoológicas. Revista de Humanidades 15:115−139.
- FAO (2024). Versión resumida del estado mundial de la pesca y la acuacultura. La transformación azul en acción. Roma. 40 pp. https://openknowledge.fao.org/items/fc569ba1-b7d4-42fc-96ae-aef050d11d37. Consultado 22/07/2024.
- Gallo-García M.C., García-Ulloa M. (2008). Crecimiento de crías de Oreochromis niloticus y Oreochromis mossambicus cultivadas en un sistema de recirculación y alimentadas con un suplemento de quistes de Artemia en la dieta comercial. Avances en Investigación Agropecuaria 11(2):71−82.
- García-Ulloa G.M., López-Chavarín H.M., Rodríguez-González H., Villarreal-Colmenares H. (2003). Growth of redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (Von Martens 1868) Decapoda: Parastacidae) juveniles fed isoproteic diets with partial or total substitution of fish meal by soya meal: preliminary study. Aquaculture Nutrition 9:25−31.
- García-Ulloa M., Gallo-García M.C., Rodríguez-González H., Góngora-Gómez A.M., Ponce-Palafox J.T. (2008). Morphometric relationship of weight and length of cultured freshwater snail, Pomacea patula (Baker, 1922), at three different life stages. Journal of the World Aquaculture Society 39(6):842−845. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2008.00222.x.
- Ghosh S., Meyer-Rochow V.B., Jung C. (2022). Farming the edible aquatic snail Pomacea canaliculata as a Mini-Livestock. Fishes 7(6):1−9. https://doi.org/10.3390/ fishes7010006
- González O., Pérez-Camargo G., Membiela M., Frezza D., Bartoloni N., Vieites C. (2008). Efecto de la densidad poblacional en la productividad de caracoles (Helix aspersa) en un sistema a cielo abierto alimentados con acelga y suplemento alimentario balanceado. Ciencia e Investigación Agraria 35(3):251−257.
- Herman E.M., Schmidt M.A. (2016). The potential for engineering enhanced functional feed soybeans for sustainable aquaculture feed. Frontiers in Plant Science 7:440. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00440
- Hernández C., Lizárraga-Velázquez C.E., Sánchez-Gutiérrez E.Y., Arriaga-Hernández D. (2022). Estrategias nutricionales y productos de soya para la alimentación de juveniles de róbalo blanco del pacífico (Centropomus viridis): hacia la Rentabilidad de su Cultivo. En: Cruz-Suárez L.E., Tapia-Salazar M., Nieto-López MG., Villarreal-Cavazos D.A., Gamboa-Delgado J., Martínez-Palacios C.A. (Eds). Investigación e innovación en nutrición acuícola, Universidad Autónoma de Nuevo León, San Nicolás de los Garza, Nuevo León, México, pp. 217−222.
- Houser R.H., Akiyama D.M. (1997). Feed formulations principles. In: D'Abramo L.R., Conklin D.E., Akiyama D.M. (Eds.). Crustacean Nutrition, Advances in World Aquaculture. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA, pp. 493−519.
- Jiménez-García M.I., Suárez-Morales E. (2017). Complementary description of Ergasilus arthrosis Roberts, 1969 (Copepoda: Poecilostomatoida: Ergasilidae), a new parasite of cichlid teleosts in southeast Mexico. Systematic Parasitology, 94: 81−90. https://doi.org/10.1007/s11230-016-9678-0
- Kirk R.S. (2002). Composición y análisis de alimentos. 5ta edn. Pearson Compañía editorial S. A de C.V., México.
- Krogdahl Å., Kortner T.M., Jaramillo-Torres A., Gamil A.A.A., Chikwati E., Li Y., Storebakken T. (2020). Removal of three proteinaceous antinutrients from soybean does not mitigate soybean-induced enteritis in Atlantic salmon (Salmo salar, L). Aquaculture 514:734495.
- Lagunes-Casique B.A. (1997). Aprovechamiento de los cuerpos de agua tropicales para la crianza intensiva del caracol dulceacuícola Pomacea sp. (Mollusca, Gastropoda) en corrales flotantes, para su integración en programas acuícolas. Tesis de pregrado, Instituto Tecnológico del Mar, Boca del Río, Veracruz, México.
- Linton-Izquierdo C., Jiménez-García I., Navarro-Angulo L.I., Pérez-Legaspi I.A., Ortega-Clemente L.A., Rojas-García C.R. (2024). Effect of shelters on the growth and cultivation performance of the endemic snail, Pomacea patula catemacensis, cultured in a recirculating system during its grow-out. Latin American Journal of Aquatic Research 52(3):508−513. https://doi.org/10.3856/vol52-issue3-fulltext-3183
- Loqui-Sánchez A.J, Tumbaco-Tigrero C.K., Zambrano-Alarcón M.E., Casignia-Coox D.A. (2022). Evaluación del crecimiento de "Piaractus brachypomus" en dos sistemas de producción complementando la alimentación con harina de soya, maíz hidropónica y su análisis sensorial. RECIAMUC 6(1):15−24. https://doi.org/10.26820/reciamuc/6.(1).enero.2022.15-24
- Mejía-Ramírez M.Á., Rocha V.V., Pérez-Rostro C.I. (2020). Economic feasibility analysis of small-scale aquaculture of the endemic snail Pomacea patula catemacensis (Baker, 1922) from southeast Mexico. Aquatic Living Resources 33:2. https://doi.org/10.1051/alr/ 2020001
- Mendoza R., Aguilera C., Hernández M., Montemayor J., Cruz E. (2002). Elaboración de dietas artificiales para el cultivo del caracol manzana (Pomacea bridgesii). Revista AquaTIC 16:1−15.
- Myklestad S., Haug A. (1972). Production of carbohydrates by the marine diatom Chaetoceros affini var. wille (Gran) Hustedt. I. Effect of the concentration of nutrients in the culture medium. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 9:125−136.
- NOM-041-PESC-2004 (2004). Pesca responsable en el lago de Catemaco, ubicado en el Estado de Veracruz. Especificaciones para el aprovechamiento de los recursos pesqueros. Norma Oficial Mexicana, Ciudad de México. https://www.dof.gob.mx/normasOficiales/1943/sagarpa/sagarpa.htm. Consultado 20/07/2024.
- Ocaña F.A., de Jesús-Navarrete A., Oliva-Rivera J.J., de Jesús-Carrillo R.M., Vargas-Espósitos A.A. (2015). Population dynamics of the native apple snail Pomacea flagellata (Ampullariidae) in a coastal lagoon of the Mexican Caribbean. Limnetica 34(1):69−78.
- Ramírez R., Solis M., Ampuero A., Morín J., Jimenez-Vasquez V., Ramirez J.L., Congrains C., Temoche H., Shiga B. (2020). Identificación molecular y relaciones evolutivas de Pomacea nobilis, base para la autenticación específica del churo negro de la Amazonia peruana. Revista Peruana de Biología 27(2):139−148. https://doi.org/10.15381/rpb.v27i2.17875
- Ramnarine I.W. (2004). Quantitative protein requirements of the edible snail Pomacea urceus (Muller). Journal of the World Aquaculture Society 35:253−256.
- Ricker W.E. (1979). Growth rates and models. In: Hoar W.S., Randall D.J., Brett J.R. (Eds.). Fish Physiology, Bioenergetics and growth. Academic Press, New York, NY, USA, pp. 599−675.
- Ruiz-Ramírez R., Espinosa-Chávez F., Martínez-Jerónimo F. (2007). Growth and Reproduction of Pomacea patula catemacensis Baker, 1922 (Gastropoda: Ampullariidae) when fed Calothrix sp. (Cyanobacteria). Journal of the World Aquaculture Society 36(1):87–95. https://doi.org/10.1111/j.1749- 7345.2005.tb00134.x
- Torres-Ariño A., Vivaldo-Patraca L.G., Serrano-Guzmán S.J. (2023). Evaluación de la sustitución de harina de pescado por la de Spirulina subsalsa Oersted ex Gomont 1892, en el crecimiento del caracol manzana Pomacea bridgesii (Reeve, 1856) en un sistema de recirculación y bajo condiciones de laboratorio. AquaTechnica 5(1):29−52. https://doi.org/10.5281/zenodo.7823443.
- Zar J.H. (2010). Biostatistical Analysis 5th edn. Pearson Prentice Hall, USA.