Published June 2, 2022 | Version v1

ВЫБОР ОПТИМАЛЬНЫХ УСЛОВИЙ ПРОЦЕССА ЭКСТРАГИРОВАНИЯ ЭКСТРАКТА ТРАВЫ ЭРВЫ ШЕРСТИСТОЙ

Description

На сегодняшний день среди актуальных задач, стоящей перед фармацевтической наукой Республики Узбекистан, является исследование интродуцированных лекарственных растений. Особого внимания из перспективных растений заслуживает эрва шерстистая (пол-пола) - Aerva lanata Juss. семейства амарантовые (Amaranthaceae). Многолетнее или двулетнее травянистое растение произрастает во многих странах Африки, Саудовской Аравии, Индии, Индонезии и др.  Впервые Aerva lanata Juss. (пол-пола) интродуцирована на территории бывшего СССР Закавказской зональной опытной станцией ВИЛР (г. Кобулетти) в середине 70-х годов, затем в Украине, в Узбекистане и Казахстане.

Files

V2I5-400.pdf

Files (1.0 MB)

Name Size
md5:88f4e74e2254f1918544dced0d030681
1.0 MB Preview Download

Additional details

References

  • 1. Korostylev A.A., Logvinenko L.A. Some biological features of Аerva wooly seeds. // Plant Biology and Horticulture: theory, innovation. 2019;(152):48-55. (In Russ.) https://doi.org/10.36305/2019-3-152-48-55 2. Коростылев А. А., Логвиненко Л.А., Шевчук O.M. К вопросу о перспективах культивирования эрвы шерстистой в Крыму и на юге России // Роль метаболомики в совершенствовании биотехнологических средств производства. Сборник трудов II международной научной конференции (г. Москва, 06-07 июня 2019 г.). Москва, 2019. С. 294-300. 3. Aluri, Jacob Solomon Raju, Rani, Sabhavath, G, Lakshminarayana, Kunuku, Venkata. Sexual systems, pollination modes and fruiting ecology of three common herbaceous weeds, Aerva lanata (L.) Juss. Ex Schult., Allmania nodiflora (L.) R.Br. and Pupalia lappacea (L.) Juss. (Family Amaranthaceae: Sub-family Amaranthoideae) // Species 2021, 22(69). р.43-55 4. Goyal M, Pareek A, Nagori BP, Sasmal D. Aerva lanata: A review on phytochemistry and pharmacological aspects. //Phcog Rev 2011;5:195-198. 5. Ankul Singh S, Gowri K, Chitra V. A Review on Phytochemical Constituents and Pharmacological Activities of the plant: Aerva lanata. //Research J. Pharm. and Tech 2020; 13(3):1580-1586. doi: 10.5958/0974-360X.2020.00286.3 6. Musaddiq S, Mustafa K, Ahmad S, et al. Pharmaceutical, Ethnopharmacological, Phytochemical and Synthetic Importance of Genus Aerva: //A Review. Natural Product Communications. 2018 Vol. 13 No. 3 375 - 385March 2018. doi:10.1177/1934578X1801300326 7. Anusha, Chithambaram Sujatha, Sini, Hariharan, Prakashkumar, Bhaskara and Nevin, Kottayath Govindan. Mechanism of protection of rat hepatocytes from acetaminophen-induced cellular damage by ethanol extract of //Interdisciplinary Toxicology. 2019. vol.12. no.4. Р.169-179. https://doi.org/10.2478/intox-2019-0021 8. Dinnimath BM, Jalalpure SS, Patil UK. Antiurolithiatic activity of natural constituents isolated from Aerva lanata. //Journal of Ayurveda and Integrative Medicine. 2017.8(4). Р.226-232. DOI: 10.1016/j.jaim.2016.11.006. PMID: 29169771; PMCID: PMC5747499. 9. Gaurav Kumar, Loganathan Karthik, Kokati Vankata Bhaskara Rao. Phytochemical composition and in vitro antioxidant activity of aqueous extract of Aerva lanata (L.) Juss. ex Schult. Stem (Amaranthaceae)//Asian Pacific Journal of Tropical Medicine. 2013. Vol. 6, Issue 3, P. 180-187, ISSN 1995-7645, https://doi.org/10.1016/S1995-7645(13)60020-6 10. Behera PC, Ghosh M. Evaluation of antioxidant, antimicrobial, and antiurolithiatic potential of different solvent extracts of Aerva lanata linn flowers. //Phcog Mag 2018.14. р. 53-57. 11. Mysoon Al-Ansari, L.A. Al-Humaid, P. Vijayaraghavan, B. Ravindran, S.W. Chang, P. Agastian, M.A. Rathi, B. Balamuralikrishnan. Identification of phytochemical components from Aerva lanata (Linn.) medicinal plants and its in-vitro inhibitory activity against drug resistant microbial pathogens and antioxidant properties //Saudi Journal of Biological Sciences. 2019. Volume 26. Issue 6. P.1129-1133, https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2019.02.010. 12. Sharma A, Taraсhand, Tanwar M., Nagar N., Sharma. Ashish К. Analgesic and Anti-inflammatory Activity of flowers extract of Aerva lanata //Adv. Pharmacol. Toxicol. 2011. Vol. 12(3). -P. 13-18 13. Pieczykolan, A., Pietrzak, W., Gawlik-Dziki, U., & Nowak, R. Antioxidant, Anti-Inflammatory, and Anti-Diabetic Activity of Phenolic Acids Fractions Obtained from Aerva lanata (L.) Juss. Molecules (Basel, Switzerland). 2021. 26(12), 3486. https://doi.org/10.3390/molecules26123486 14. Appapalam S, Panchamoorthy R. Aerva lanata mediated phytofabrication of silver nanoparticles and evaluation of their antibacterial activity against wound associated bacteria// Journal of the Taiwan Institute of Chemical Engineers, 2017, 78, 539-551. 15. Omotoso KS, Aigbe FR, Salako OA, Chijioke MC, Adeyemi OO. Toxicological evaluation of the aqueous whole plant extract of Aerva lanata (l.) Juss. ex Schult (Amaranthaceae). //J Ethnopharmacol. 2017.17;208:174-184. doi: 10.1016/j.jep.2017.06.032. Epub 2017 Jun 28. PMID: 28668647. 16. Планирование и организация эксперимента: практикум для бакалавров направления подготовки 221700.62 «Стандартизация и метрология» всех форм обучения / сост. : М. Ю. Черняк, М. С. Эльберг ; Сиб. гос. аэрокосмич. ун-т. – Красноярск, 2014. – 88 с. 17. Чубинский А.Н. Методы и средства научных исследований. Методы планирования и обработки результатов экспериментов: учебное пособие для студентов. / А.Н. Чубинский, Д.С. Русаков, И.М. Батырева, Г.С. Варанкина – СПб.: СПбГЛТУ, 2018.– 109 с. 18. Chistova Yu.I. Determination of the optimal extraction conditions of dandelion herb and large burdock leaf specie by methods of mathematical planning of a multifactorial experiment // Drug development & registration. 2019; 8(1):24-28. (In Russ.) https://doi.org/10.33380/2305-2066-2019-8-1-24-28 19. Milić P. S., Rajković K. M., Stamenković O. S., Bekrić D. M., ArsićArsenijević V., Jovanović P. D., Veljković V. B. Statistical modeling and optimization of classical and ultrasound-assisted extraction of the minerals from Galium mollugo L. by response surface methodology and genetic algorithm. //Journal of food processing and preservation. 2018; 42(3). 20. Xiang Zhang, Caimei Gu, Bashir Ahmad, and Linfang Huang. Optimization of Extract Method for Cynomorium songaricum Rupr. by Response Surface Methodology //Hindawi Journal of Analytical Methods in Chemistry Volume 2017, Article ID 6153802, 7 pages https://doi.org/10.1155/2017/6153802 21. Смагунова, А. Н. Математическое планирование эксперимента в методических исследованиях аналитической химии: учебное пособие / А. Н. Смагунова, Г. В. Пашкова, Л. И. Белых. 3-е изд., стер. Санкт-Петербург: Лань, 2021. 120 с. ISBN 978-5-8114-2540-2. 22. URL: https://e.lanbook.com/book/169000 (дата обращения: 01.09.2021). 23. Глазырина Л.Л., Карчевский М.М. Введение в численные методы: учебное пособие / Л.Л. Глазырина, М.М. Карчевский. — Казань: Казан. ун-т, 2017. — 122 с. 24. Белокуров С., Наркевич И., Флисюк Е., Каухова И., Ароян. М. Современные методы экстрагирования лекарственного растительного сырья (обзор) //Химико-фармацевтический журнал. 2019/07/31.-С. 48- 53. DOI- 10.30906/0023-1134-2019-53-6-48-53 25. Адекенов С. М., Хабаров И. А., Искаков А. Оптимизация технологии экстракции корней Peganum harmala L. // Химия растительного сырья, 2020. № 3. С. 279-284. URL: http://journal.asu.ru/cw/article/view/7763. 26. Chaves JO, de Souza MC, da Silva LC, Lachos-Perez D, Torres-Mayanga PC, Machado APdF, Forster-Carneiro T, Vázquez-Espinosa M, González-de-Peredo AV, Barbero GF and Rostagno MA (2020) Extraction of Flavonoids from Natural Sources Using Modern Techniques. //Front. Chem. 8:507887. doi: 10.3389/fchem. 2020.507887 27. ФС.2.5.0054.15 Эрвы шерстистой трава. Государственная фармакопея Российской Федерации XIII. Москва, 2015. Т. 3. С. 766-774. 28. Хужакулова Д.Ч., Кароматов И.Дж. Пол-пала (обзор литературы) // Биология и интегративная медицина. 2017. №5. С. 183-192.