Une chatte domestique de 9 ans, pesant 3,5 kg, a été examinée pour un antécédent de 1,5 mois de respiration laborieuse persistante. Trois mois avant la présentation, la chatte a développé une tachypnée paroxystique qui s'est progressivement aggravée et a été traitée par la théophylline, la bromhexine et la cetirizine par le vétérinaire principal. Une amélioration a été observée dans la tachypnée, mais les signes d'un effort respiratoire accru ont persisté. La propriétaire a déclaré que la chatte avait un antécédent de 1 an de toux peu fréquente, survenant environ deux fois par mois. La chatte n'avait pas été vaccinée depuis des années et était entièrement logée à l'intérieur. La prophylaxie vermifuge n'a pas été administrée régulièrement. Selon la propriétaire, il n'y avait pas eu d'exposition connue à un polluant ou à une substance toxique en intérieur. Lors de la présentation, l'auscultation du thorax a révélé une diminution des sons pulmonaires et des craquements subtils. L'hématologie et la biochimie sérique étaient normales. Les tests sérologiques pour les anticorps IgG de Toxoplasma gondii, les anticorps de la dirofilariose féline, l'antigène cryptococcus et les anticorps FIV/FeLV étaient négatifs. La radiographie thoracique a révélé une hyperinflation pulmonaire significative et un modèle broncho-interstitiel diffus avec une opacité focale accrue dans le lobe pulmonaire médian droit et les champs pulmonaires caudodorsaux, qui a montré une augmentation du volume minute (906 ml/kg; chez les chats témoins normaux, 299,8 ± 52,1 ml/kg) et une limitation du flux expiratoire tardif (rapport PEF/EF25 = 2,79; chez les chats témoins normaux, 1,64 ± 0,18) lors d'une respiration naturelle [] La terbutaline (0,01 mg/kg) a été administrée par voie sous-cutanée en tant que test de bronchodilatation, ainsi qu'un traitement expérimental. Après environ 30 minutes, l'enregistrement BWBP a été répété et a révélé une réduction du volume minute (537 ml/kg; chez les chats témoins normaux, 299,8 ± 52,1 ml/kg) et du rapport PEF/EF25 (2,13; chez les chats témoins normaux, 1,64 ± 0,18), qui étaient encore anormalement élevés, suggérant une réponse incomplète au bronchodilatateur à courte durée d'action. Le diagnostic différentiel à ce stade a été considéré comme étant les étiologies associées à l'hyperinflation pulmonaire et aux maladies obstructives des voies respiratoires inférieures, y compris la maladie des voies respiratoires inférieures des chats (FLAD) avec un phénotype de bronchoconstriction irréversible, l'emphysème ou les bulles pulmonaires. Des diagnostics complémentaires, tels que la TDM thoracique, ont été suggérés, et le propriétaire a préféré une imagerie sous sédation seule pour réduire le risque associé à l'anesthésie. La terbutaline (0,14 mg/kg PO q8h), la prednisolone (0,6 mg/kg PO q12h) et l'enrofloxacine (2,5 mg/kg PO q12h) ont été prescrites en tant que traitement expérimental pour une éventuelle FLAD avec une infection concomitante des voies respiratoires inférieures. Une TDM pulmonaire a été réalisée deux jours plus tard, qui n'a révélé aucune preuve d'emphysème ou de bulles pulmonaires. Cependant, des opacités sous-pleurales en verre dépoli (GGO) distantes et marginées ont été observées dans les lobes pulmonaires caudaux bilatéraux et une petite partie du lobe crânien gauche. Il semblait y avoir une bronchectasie plus sévère dans les bronches vers ces régions. D'autres résultats comprenaient des opacités en arbre-en-bourgeon et des parois bronchiques légèrement épaissies. Les images de TDM ne confirmaient pas le diagnostic provisoire de FLAD typique, et le soupçon d'une étiologie infectieuse a été soulevé. La prednisolone a été temporairement retirée en raison de la présence d'une infection active, et la clindamycine (12 mg/kg PO q12h) a été prescrite en plus. Après un traitement antibiotique et bronchodilatateur de 10 jours, le chat a connu une amélioration de ses activités à la maison, mais a toujours présenté une respiration laborieuse, qui semblait s’aggraver progressivement. Le propriétaire a accepté la procédure de BAL à ce moment-là, et l’échantillonnage a été prévu dans les 6 jours avec un retrait immédiat des antibiotiques. La BAL non bronchoscopique a été réalisée en faisant passer de manière aseptique un tube de chlorure de polyvinyle stérile de 8 Fr à travers le tube endotrachéal pour qu’il soit coincé dans les voies respiratoires distales. La position dorsale a été utilisée chez ce chat pour obtenir des échantillons de la région dorsale du poumon, qui présentait de multiples GGO sous-pleuraux sur les images de tomodensitométrie. Deux bolus de 7,5 ml de solution saline stérile réchauffée (suivie de 2 ml d’air) ont été instillés, et le liquide récupéré (8,2 ml) était trouble et présentait des quantités importantes de mucus. Un seul poumon a été prélevé pour éviter de compromettre davantage l’état du patient. Le liquide BAL a été traité immédiatement après la collecte, et la cytologie a montré une hypercellularité (1037 cellules/μl; intervalle de référence [IR] 200-400/μl) avec 88,5 % de neutrophiles (IR < 7 %), 7,7 % de macrophages (IR 65 %-80 %), 3,4 % de lymphocytes (IR < 10 %), et 0,4 % d’éosinophiles (IR < 17 %) [–]. L’examen microbiologique de routine, y compris la culture bactérienne aérobie et anaérobie, la PCR de Mycoplasma et la culture fongique, a été négatif. Des examens complémentaires ont été tentés pour étudier d’autres pathogènes viraux courants par PCR, y compris le coronavirus félin, le calicivirus et l’herpèsvirus; les deux premiers étaient négatifs, et le dernier était positif dans l’échantillon BAL. Compte tenu de la présence du virus de l'herpès dans le liquide BAL, ainsi que des résultats négatifs d'autres pathogènes, du manque de vaccination adéquate chez ce chat et d'autres résultats cliniques, une bronchiolite induite par le virus de l'herpès a été diagnostiquée en conséquence. En l'absence de traitement standard connu pour la bronchiolite virale chez les petits animaux, la stratégie thérapeutique a été axée sur les soins de soutien, la bronchodilatation, les mucolytiques et le traitement anti-inflammatoire. Au cours des 6 semaines suivantes, plusieurs tentatives de bronchodilatation (terbutaline, PO ou SC; théophylline à libération prolongée, PO; ipratropium, nébulisé) ont été utilisées séparément ou en association; aucune de ces méthodes n'a pu soulager efficacement la respiration laborieuse du chat. L'utilisation de corticostéroïdes inhalés a été envisagée, mais le propriétaire n'a pas obtenu la coopération du chat. La prednisolone orale a été prescrite à une dose anti-inflammatoire relativement faible de 1,1 mg/kg/jour, avec une observation attentive de la possible réactivation du virus. L'enrofloxacine précédemment prescrite a été poursuivie dans le but de prévenir une infection bactérienne secondaire, et elle a ensuite été remplacée par la doxycycline en raison de son potentiel effet immunomodulateur. La lysine a été administrée à une dose de 1000 mg/jour, et aucun autre agent antiviral n'a été considéré en raison de l'absence de preuves solides de l'efficacité du traitement. L'activité, l'appétit et l'effort respiratoire du chat ont fluctué au cours des 5 semaines suivant la BAL, mais l'état clinique général s'est détérioré rapidement au cours des derniers jours. Le chat est mort 8 semaines après la présentation initiale. L'autopsie a révélé un poumon hypergonflé avec des foyers géographiques, rouge foncé, bien délimités et légèrement durs sur les lobes caudaux bilatéraux et le lobe crânien gauche. De nombreux petits bulles d'air étaient présents dans le parenchyme pulmonaire de chaque lobe, ce qui suggère une surinflation des alvéoles. Un excès de mucopurulent jaune-vert remplissait les bronches bilatérales. L'histopathologie a révélé que la plupart des lésions étaient centrées sur les bronchioles, avec extension dans l'interstitium et distribution sous-pleurale. Certains bronches étaient également touchés, et les lumières bronchiale et bronchiolaire étaient remplies d'un abondant mucus, de débris cellulaires amorphe, de neutrophiles et de macrophages, avec une métaplasie épithéliale squameuse. Une hyperplasie des glandes sous-muqueuses avec une inflammation lymphoplasmocytaire modérée à marquée était également présente. Une hyperplasie épithéliale bronchiolaire avec hypertrophie sévère des muscles lisses entourant les bronches et les bronchioles et une fibrose interstitielle modérée adjacente aux septums alvéolaires étaient présentes. Les petits bronchioles présentaient un degré variable de fibrose concentrique sous-muqueuse comprimant et réduisant le diamètre de la lumière, avec infiltration lymphoplasmocytaire. Ces changements histologiques étaient compatibles avec une bronchiolite obstructive constrictive induite par une infection antérieure par le virus de l'herpès félin, comme la nécrose des tissus, les cellules syncytiales et les corps d'inclusion virale, mais le virus n'a pas été détecté lors de l'examen histopathologique. Un morceau de tissu pulmonaire de la région dorsale du lobe caudal a été prélevé et soumis à une PCR pour le virus de l'herpès félin, mais le virus n'a pas été détecté. Compte tenu du temps écoulé entre le début des symptômes ou le BAL et la nécropsie, on a émis l'hypothèse que les changements pathologiques pouvaient être différents de ceux observés chez les chats atteints d'une pneumonie aiguë à virus de l'herpès. Par conséquent, une bronchiolite obstructive induite par une infection antérieure par le virus de l'herpès félin reste fortement suspectée dans ce cas.