Une femelle birmane de cinq ans, castrée, d'origine suédoise et britannique, a commencé un traitement de gestion de la dermatite allergique consistant en un court traitement de 5 mg de prednisolone deux fois par jour, rapidement diminué et arrêté après 3 semaines. Ce programme a été répété cinq fois au cours des 6 prochains mois jusqu'à ce qu'à l'âge de 11 ans, la chatte ait reçu une injection unique de méthylprednisolone (Depo-Medrol 20 mg i.m.) et, dans les 5 jours, ait présenté une polydipsie et une polyurie. L'analyse d'urine à domicile (Keto-Diastix, Bayer) a révélé une glycémie (2+) sans cétonuria et, lors de l'évaluation vétérinaire initiale 2 jours plus tard, la chatte pesait 3,2 kg (poids enregistré précédent de 3,5 kg 18 mois plus tôt) et avait un indice de masse corporelle de 4 (sur une échelle de 9 points []), sans autre anomalie significative détectée lors de l'examen physique. La biochimie sérique de routine a révélé une hyperglycémie marquée (concentration de glucose sanguin de 29,8 mmol/L (intervalle de référence de 3,9 à 8,8) et une augmentation de la fructosamine (481 µmol/L, 190 à 340). Tous les autres paramètres mesurés étaient dans les limites normales. La gestion initiale consistait en une alimentation riche en protéines et pauvre en glucides (aliments humides et secs Purina DM, administrés à volonté dans un rapport d'au moins 3:1) et une insuline lente porcine (Caninsulin, MSD Animal Health), administrée deux fois par jour (1 unité q12 h, débutée immédiatement (sept jours après l'injection de méthylprednisolone). La surveillance du sang capillaire a été commencée en utilisant un glucomètre calibré pour le sang humain utilisé chez les chats (Accu-Chek Aviva, Roche UK; intervalle de référence chez les chats de 2,8 à 5,5 mmol/L) et la glycémie a été prise avant l'injection d'insuline. Certains jours, la glycémie a également été mesurée plus fréquemment entre les injections d'insuline; par exemple toutes les 3 heures ou lorsqu'une hypoglycémie était suspectée). La figure montre tous les résultats des tests de glycémie pour les 4 premiers mois de gestion. Au cours des 7 premiers jours de test, la valeur moyenne de la glycémie était de 21 mmol/L. Le propriétaire a obtenu une échantillon d'urine, qui a été livré à la clinique vétérinaire locale et qui a révélé une croissance pure d'un Enterococcus. Compte tenu des circonstances cliniques, cela était suspecté d'être une infection urinaire et a été traité avec des antibiotiques par le vétérinaire. Le 27e jour, le chat était sous insuline lente porcine, 2,5 unités d'insuline q12 h et les courbes de glucose ont documenté des chutes nettes de glucose en réponse aux injections, avec un nadir autour de 4 h. On a considéré que la courte durée d'action de l'insuline pouvait être un facteur limitant pour obtenir un bon contrôle glycémique et le chat a été initié à la glargine, un analogue d'insuline enregistré pour usage humain. La glargine q12 h (4,5-6,5 unités par jour; 2-3,5 unités par injection; Lantus, Sanofi-Aventis) ne semblait pas différer dans le schéma des réponses au glucose, limitant à nouveau la dose quotidienne totale d'insuline qui pouvait être administrée sans risque inacceptable d'hypoglycémie. Pour cette raison et, préoccupé par le fait que la chance de récupération des cellules β diminuait avec la durée croissante de l'hyperglycémie, le 47e jour, une décision a été prise d'augmenter la fréquence des injections de glargine à 8 heures, avec une légère augmentation de la dose quotidienne totale d'insuline (à 5,5-7 unités par jour; 1,5-2,5 unités par injection) et la dose quotidienne d'insuline a été réduite de 2 unités q6 h le 64e jour à 0,25 unités q6 h le 77e jour. Une surveillance intensive, souvent toutes les trois heures, les jours 67-70 a révélé que la valeur la plus basse de glucose sanguin était de 2,7 mmol/L les jours 64 et 67. Bien qu'une seule valeur de glucose sanguin < 2,8 mmol/L ait été enregistrée, le propriétaire-médecin a interprété l'hyperglycémie relative pendant cette période comme représentant une hyperglycémie de rebond, et a continué à réduire la dose d'insuline. Les jours 62 et 65, la dose d'insuline a été réduite de 21 et 37 %, respectivement; la diminution de la dose au cours de cette période n'a pas été supérieure à 20 %. Les jours 77 et 102, les taux de glucose sanguin de 2,7 et 2,1, respectivement, ont été enregistrés et n'ont pas été suivis d'hyperglycémie. À partir du 77e jour, lorsque le chat recevait une dose quotidienne totale de 1 unité de glargine, les concentrations de glucose étaient principalement dans la fourchette de référence. Cependant, il semblait que l'insuline était toujours nécessaire pour atteindre l'euglycémie, et que les besoins pour atteindre l'euglycémie augmentaient. Au 95e jour, à 0,5 unité q6 h glargine, les concentrations de glucose étaient de 6 à 8 mmol/L et une concentration de fructosamine était de 280 µmol/L, au milieu de la fourchette de référence. Au 98e jour, il a été noté que le poids avait augmenté à 3,9 kg avec un indice de condition corporelle de 6. L'apport calorique total a ensuite été limité à un maximum de 75 g de nourriture humide et 25 g de nourriture sèche (Purina DM) et l'activité physique a été augmentée en jouant avec le chat plusieurs fois par jour. Dans les 5 jours suivants, l'insuline a été retirée et un mois plus tard, une visite a été faite au vétérinaire local. La fructosamine était de 271 µmol/L. Au cours des 4 années suivantes, le chat est resté indépendant de l'insuline et, lorsque les concentrations de glucose sont mesurées (occasionnellement), elles se situent entre 4,6 et 5,1 mmol/L.