Une Japonaise de 36 ans (gravida 1, para 1) a consulté notre clinique en raison d'une infertilité secondaire. Sa première grossesse à 31 ans était naturelle et elle a accouché d'un bébé de 3320 g par voie vaginale à 39 semaines et 5 jours de gestation sans complications périnatale. La patiente avait des cycles menstruels réguliers de 30 jours. Son indice de masse corporelle (IMC) était de 18,6 (taille 159,5 cm, poids 47,2 kg). Les antécédents médicaux et familiaux étaient sans importance. Un examen interne n'a révélé aucune anomalie dans l'utérus ou les ovaires. L'échographie a révélé un modèle polycystique dans l'ovaire droit; cependant, la patiente n'a pas été diagnostiquée avec le syndrome des ovaires polykystiques. Les taux d'hormones anti-Müllerian hormone (AMH), estradiol (E2) cycle jour 3 (CD 3), hormone folliculo-stimulante (FSH) et hormone lutéinisante (LH) étaient respectivement de 7,44 ng/mL, 23,0 pg/mL, 7,3 mU/mL et 7,4 mU/mL. L'hystérosalpingographie a montré un passage des trompes bilatéral. L'analyse du sperme du mari n'a révélé aucune anomalie dans le volume du sperme, le nombre de spermatozoïdes ou la motilité des spermatozoïdes selon les critères de l'OMS de 2010. Après cinq cycles de rapports sexuels programmés suivis de cinq cycles d’insémination intra-utérine avec le sperme du mari, aucune grossesse n’a été établie. La patiente a donc subi une fécondation in vitro (FIV). Une stimulation ovarienne contrôlée a été réalisée à l’aide d’un protocole antagoniste de l’hormone de libération des gonadotrophines (GnRH). La FSH urinaire purifiée (150 IU, Gonapure, ASKA Pharmaceutical, Tokyo, Japon) a été administrée tous les deux jours, et du clomifène (50 mg/jour, Clomid, Shionogi Co. Ltd., Osaka, Japon) a été administré pendant cinq jours à partir du CD 3. Au CD 10, la gonadotrophine ménopausique humaine (225 IU, Ferring Pharma, Tokyo, Japon) a été administrée avec un antagoniste de la GnRH (0,25 mg, Ganirest, seringues sous-cutanées, MSD, Tokyo, Japon). Au CD 12, une échographie transvaginale a montré 14 follicules de plus de 16 mm, et le taux d’E2 sérique était de 1332 pg/mL. La maturation finale des ovocytes a été déclenchée par une injection sous-cutanée de gonadotrophines chorioniques recombinantes humaines (rhCG) (0,25 μg, Ovidrel, Serono Inc., Tokyo, Japon) et par un spray nasal d’un agoniste de la GnRH (600 μg, Buserecure, Fuji Pharma, Tokyo, Japon). Le prélèvement des ovocytes a été effectué 35 heures après le déclenchement sous anesthésie générale. Au total, 15 complexes cumulus-ovocytes ont été prélevés, et 12 ovocytes ont atteint le stade MII. La FIV conventionnelle et l’injection intracytoplasmique de spermatozoïdes (ICSI) ont été réalisées en fonction des paramètres du sperme. Tous les embryons ont été cultivés dans le milieu ONESTEP (NAKA Medical Inc., Tokyo, Japon) sous 6 % d’O2, 5 % de CO2 et 90 % de N2. La qualité des embryons au stade de clivage a été évaluée au jour 3 en fonction des critères de Veeck [] et les blastocystes ont été évalués en fonction de la classification de Gardner []. Un embryon de clivage (10 cellules, G2) et sept blastocystes (trois blastocystes pour 4AA, un blastocystes pour 4AB, et deux blastocystes pour 4BB) ont été cryoconservés par vitrification en utilisant le système de transporteur Cryotop (Kitazato Biopharma Co., Tokyo, Japon) selon les instructions du fabricant. La FET a été programmée, et la préparation endométriale a été réalisée en utilisant un cycle de remplacement hormonal (HRC) ou un cycle naturel modifié. Dans le HRC, l'estradiol transdermique (0,72 mg, Estrana TAPE, Hisamitsu Pharmaceutical, Tokyo, Japon) a été initié le CD 3. Le traitement progestatif par comprimés vaginaux (300 mg/jour, LUTINUS Vaginal Tablet, Ferring Pharmaceuticals Co., Ltd., Tokyo, Japon) et par comprimés oraux de dydrogestérone (30 mg/jour, Duphaston, Mylan EPD, Tokyo, Japon) a été initié lorsque l'épaisseur de l'endomètre a atteint 8 mm. La FET a été programmée 3 à 5 jours après le début du traitement progestatif. Dans le cycle naturel modifié, rhCG (0,25 μg, Ovidrel, Serono Inc., Tokyo, Japon) a été injecté lorsque l'épaisseur de l'endomètre et le diamètre du follicule ont atteint plus de 8 et 16 mm, respectivement. La TE vitrifiée et réchauffée a été programmée 4 à 6 jours après l'administration de rhCG, en fonction du stade embryonnaire. Au cours du premier cycle de FET, un blastocyste de catégorie 4BB a été transféré sous le HRC. Au cours du deuxième cycle de FET, un embryon précoce clivé, de catégorie G2, a été transféré sous un cycle naturel modifié. Au cours du troisième cycle de FET, un blastocyste de catégorie 4AB a été transféré sous un cycle naturel modifié. Tous les embryons utilisés dans ces trois transferts d'embryons étaient d'origine IVF conventionnelle. Cependant, les trois cycles de FET n'ont pas abouti à une grossesse. Après trois cycles d'échec de FET, la patiente a décidé de subir un test ERA (IGENOMIX, Valence, Espagne). La préparation endométriale pour le test ERA a été réalisée en utilisant le HRC standard décrit ci-dessus. Le jour initial de l'administration de progestérone a été fixé comme 0 h d'exposition à la progestérone. L'échantillonnage endométrial a été réalisé après 125 h d'exposition à la progestérone en utilisant un échantillonneur endométrial Pipelle (Laboratoire CCD, Paris, France). Les échantillons ont été traités et expédiés conformément aux instructions du fabricant. Les résultats ERA ont été tablés comme rapportés par IGENOMIX et classifiés comme réceptifs ou non réceptifs. Les résultats non réceptifs ont été considérés comme pré- ou post- réceptifs, et les détails des recommandations d'ajustement endométrial ou de rebiopsie ont été documentés. En outre, la présence ou l'absence de CE dans l'endomètre biopsié a été examinée. Les critères diagnostiques pour CE étaient basés sur une étude antérieure []. En conséquence, CE a été définie comme la présence d'une ou plusieurs cellules plasmatiques/champ de haute puissance (x 40) dans l'immunostainage CD138 et classifiée comme score 1 pour 1-5 cellules/hpf, score 2 pour 6-20 cellules/hpf, et score 3 pour plus de 20 cellules/hpf. Le premier test ERA a été effectué 125 heures après l'exposition à la progestérone. Le laboratoire a indiqué que l'endomètre était dans une phase non réceptive (post-réceptive) et a recommandé de refaire le test 101 heures après l'exposition à la progestérone. Un test CE simultané a indiqué un score de 3. Elle a reçu des antibiotiques pendant 2 semaines avec 0,5 g/jour de lévofloxacine et 1 g/jour de métronidazole pour traiter la CE. Par la suite, le deuxième test ERA a été effectué 101 heures après l'exposition à la progestérone. Le laboratoire a indiqué que l'endomètre n'avait pas atteint la WOI et a estimé que la WOI était de 113 ± 3 heures après l'exposition à la progestérone. Nous avons remis en question les résultats de la WOI estimée et avons effectué le troisième test ERA après avoir obtenu le consentement éclairé de la patiente. Le troisième test ERA a été effectué 113 heures après l'exposition à la progestérone. Le laboratoire a indiqué que l'endomètre était dans une phase non réceptive (pré-réceptive) et a estimé que la WOI était de 137 ± 3 heures après l'exposition à la progestérone. Un test CE effectué en même temps que les deuxième et troisième tests ERA a indiqué un score de 1 pour l'endomètre collecté. Selon les résultats du troisième test ERA, le blastocyste vitrifié et réchauffé classé 4AA, qui était issu d'une ICSI, a été transféré à 137 heures d'exposition à la progestérone, ce qui correspond à 12 heures de retard par rapport au cycle normal de FIV. Une grossesse a été obtenue au cours de ce cycle de FIV, et la patiente a accouché par voie vaginale d'un nouveau-né de sexe masculin pesant 2970 g à 39 semaines et 5 jours. Un an plus tard, une autre FET d'un blastocyste 4AA a été réalisée dans le HRC, et une grossesse a été obtenue après 137 heures d'exposition à la progestérone. Elle a accouché d'une fille viable pesant 2168 g à 33 semaines et 2 jours après une rupture inattendue de la membrane survenue à 33 semaines et 1 jour. Le moment de l'échantillonnage de l'endomètre et le WOI recommandé par les trois tests ERA sont indiqués dans la figure.